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Ranvier, Louis-Antoine .
Paris : bureaux du Progrès médical,
1880.
Cote : 35856.
Exemplaire numérisé : BIU Santé (Paris)
Adresse permanente :
https://www.biusante.parisdescartes.fr/histmed/medica/cote?35856
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Nombre de réponses : 481
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Image : Fig. 1. Coupe transversale de l'embryon de poulet vers la 50° heure de l'incubation
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Image : Fig. 2. Une cellule vaso-formative développée dans une tache laiteuse du grand épiploon du lapin
44
Image : Fig. 3. Coupe de la poche ou corps de l'hydre d'eau douce. L'ectoderme, le mésoderme sont superposés de haut en bas/ Fig. 4. Cellules névro-musculaires de l'hydre d'eau douce, d'après Kleinenberg
67
Image : Fig. 5. Faisceaux primitifs rompus, laissant voir la sarcolemme au niveau de leur rupture. La figure inférieure montre l'aspect produit par l'action de la potasse
77
Image : Fig. 6. Faisceau musculaire de la patte d'une mouche et son tendon d'après Amici. La partie supérieure de la figure montre un faisceau contracté
80
Image : Fig. 7. Faisceau musculaire des pattes de l'hydrophile observé à la lumière polarisée (d'après Brücke)
82
Image : Fig. 8. Fibrille divisée en cases musculaires. D M, disques minces (cette figure répond à l'image du muscle au repos d'après Krause)
84
Image : Fig. 9. Striation du faisceau primitif d'après Hensen. D M, Disque mince. S I, Strie intermédiaire occupant la partie médiane du disque épais, indiquée schématiquement par une ligne ondulée
90
Image : Fig. 10
96
Image : Fig. 11. Faisceau primitif des muscles moteurs de l'aile de l'hydrophile entouré par les trachées
97
Image : Fig. 12. Division des fibrilles des muscles moteurs de l'aile du xylocope
99
Image : Fig. 13. Divers aspects fournis par la fibrille des muscles de l'aile de l'hydrophile à différents degrés de tension, mm, disques minces; ee, disques épais; bc, bc, bandes claires; hh, bandes claires de Hensen
102
Image : Fig. 14
103
Image : Fig. 15
108
Image : Fig. 16. Faisceau musculaire primitif de la patte de l'hydrophile après macération dans l'eau
115
Image : Fig. 17. Schéma d'une onde latérale
121
Image : Fig. 18. A, lame de caoutchouc marquée de points; - B, la même étirée montrant l'arrangement pris par les molécules situées dans l'aire des points quand l'étirement a été dans le sens de la flèche/ Fig. 19. Coupe de cartilage diarthrodial perpendiculaire à la surface et examinée à la lumière polarisée, - les parties isotropes sont en noir pur
134
Image : Fig. 20. Appareil pour l'excitation d'un muscle
135
Image : Fig. 21. Détails d'une des bornes
136
Image : Fig. 22. Schéma des 3 stades de la contraction d'après Merkel
143
Image : Fig. 23. Myospectroscope
165
Image : Fig. 24. A, schéma d'un faisceau primitif strié au repos. DF, disques épais figurés par des sphères. B cl, bandes claires. EI, espaces interfibrillaires. B, schéma du même faisceau supposé contracté et maintenu en extension (mêmes indications)
182
Image : Fig. 25
188
Image : Fig. 26
190
Image : Fig. 27
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Image : Fig. 28. Petit myographe
195
Image : Fig. 29. C, secousse de clôture. R, secousse de Rupture/ Fig. 30. Diminution de l'amplitude des secousses par la fatigue
197
Image : Fig. 31. Muscles de la cuisse et gastrocnémien de la grenouille excités par une seule secousse (C. R.), clôture et rupture, et maintenance en contraction (T) par la secousse de rupture. La ligne du tétanos ne présente aucune ondulation
198
Image : Fig. 32. Muscle blanc du lapin : (T), tétanos alternant avec deux secousses, clôture et rupture (C. R.) et montrant des secousses non entièrement fusionnées
199
Image : Fig. 33. influence de la fatigue sur la production du tétanos électrique dans la gastronomien de la grenouille
201
Image : Fig. 34. Influence de la fatigue et du refroidissement sur les muscles pâles du lapin
203
Image : Fig. 35. AB, retard du muscle de grenouille frais. A'B', retard de ce même muscle fatigué (la vitesse du cylindre reste la même)
204
Image : Fig. 36. Augmentation du temps perdu d'un muscle blanc sous l'influence de la fatigue
206
Image : Fig. 37. Diminution du temps perdu du muscle blanc quand on augmente l'intensité du courant
208
Image : Fig. 38. Schéma de l'inversion de la striation musculaire pendant la contraction (dans la théorie de Merkel)
210
Image : Fig. 89. Courbes de contraction d'un muscle rouge du lapin
211
Image : Fig. 40. Tétanos du muscle rouge et du muscle pâte produits par un même nombre de secousse
212
Image : Fig. 41
213
Image : Fig. 42. Diminution du temps perdu par un muscle rouge fatigué quand on augmente l'intensité du courant (tracé réduit)
214
Image : Fig. 43. Influence de la fatigue sur le muscle rouge. Le tétanos n'a point une amplitude proportionnelle à celle des secousses. Le muscle inexcitable par des secousses isolées, peut être tétanisé
216
Image : Fig. 44. Effets de la fatigue sur le triceps huméral du lapin tracé réduit de 173
222
Image : Fig. 45. Fibre musculaire de la nageoire dorsale de l'hippocampe
224
Image : Fig. 46. Coupe transversale d'une portion de faisceau primitif
225
Image : Fig. 47. hh', face supérieure d'une coupe; bb' sa face inférieure. Ces deux faces ont subi le gonflement par imbibition; la partie moyenne, mm', l'a éprouvé à un moindre degré
227
Image : Fig. 48. Fragment d'un faisceau primitif du couturier de la grenouille (acide osmique picrocaminate, acide acétique, compression légère)
229
Image : Fig. 49. Demi tendineux (Lapin). Grand adducteur (Lapin). Couturier de la grenouille; m, substance musculaire; m, noyaux; s, sarcoiemme
232
Image : Fig. 50. Coupe du calcanéum d'un jeune lapin au niveau du point, etc. le tendon d'insère au cartilage
240
Image : Fig. 51. C, substance musculaire divisée longitudinalement en cylindres primitifs. p, terminaison de ces cylindres. m, sarcolemme.s, le même réfléchi sur la cupule tendineuse du tendon, t
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Image : Fig. 52. Faisceau primitif d'un muscle d'hippocampe
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